1. Määrimismeetod on slaidi valmistamise meetod, kattes materjali klaasist liumägi.
Määrimismaterjalid hõlmavad üherakulisi organisme, väikeseid vetikaid, verd, bakterikultuuri vedelikku, loomade ja taimede lahtiste kudede, munandite, sipelgad jne.
Määrimisel tuleb märkida järgmised: (1) klaasist liumägi peab olema puhas. (2) Klaasklait peab olema tasane. (3) Katmine peab olema ühtlane. Tilgutage määrdevedelik klaasklaidi keskele paremal küljel ja levitage seda ühtlaselt skalpelli tera või hambaorkina. (4) Katmine peab olema õhuke. Kasutage surujana teist klaasist slaidi ja suruge õrnalt vasakule piki klaasist libisemist määrdevedelikuga (kahe klaasise slaidi vaheline nurk peaks olema 30 kraadi -45 kraad), et moodustada ühtlane õhuke kiht. (5) Fikseerimine. Kui on vaja fikseerimist, saab fikseerimiseks kasutada keemilisi fikseerivaid või kuivatamismeetodeid (baktereid). (6) värvimine. Bakterite jaoks kasutatakse metüleensinist, Wrighti plekki kasutatakse vere jaoks ja mõnikord saab joodi kasutada. Värvimisvedelik peaks katma kogu määrdepinna. (7) Loputa. Kuivab imava paberiga või küpsetage kuiv. (8) Pitseerimine. Pikaajaliseks ladustamiseks kasutage slaidi tihendamiseks Kanada kummi.
2.. Pressimismeetod on meetod bioloogiliste materjalide paigutamiseks slaidi ja katte libisemise vahele, teatud rõhu kandmiseks ja kudede rakkude pigistamiseks.
3. Kinnitusmeetod on meetod bioloogiliste materjalide tihendamiseks tervikuna, et teha slaidproov. Seda meetodit saab kasutada ajutiste või püsivate slaidide valmistamiseks.
Klaidide paigaldamise materjalid hõlmavad järgmist: mikroorganismid nagu Chlamydomonas, Spirogyra, Amoeba, Nematoodid; Hydra, taimelehe epidermis; Putukate tiivad, jalad, suuosad, inimese suukaudsed epiteelirakud jne.
Kinnitusmeetodi koostamisel pöörake tähelepanu järgmisele: (1) Slaidi hoidmisel hoidke see kindlasti tasaselt või asetage platvormile. Vesi tilkudes peaks vee kogus olema sobiv, nii et see katab lihtsalt katte libisemisega. (2) Materjal tuleks laiali jaotada lahkneva nõela või pintsettidega ilma kattumata ja tasapinnal lamedamata. (3) Katte libisemisel katke see aeglaselt veelangusele ühelt küljelt, et vältida mullisid. (4) Värvimisel tilk tilk värvimisvedelikku kattekipi ühele küljele ja neelake see teiselt poolt absorbeeriva paberiga, et proov oleks kattekihis ühtlaselt värvitud. Pärast värvimist kasutage sama meetodit, et tilk puhta vee tilk, imenduda värvimisvedelik ja jälgige mikroskoobi all.
4. lõigud on slaidiproovid, mis on valmistatud organismidest lõigatud õhukestest viiludest.
Erinevate nõuete tõttu saate käsitsi viilutamiseks või koeploki manustada parafiini või kollodioni või külmutada selle madalal temperatuuril ja viilutada see mikrotoomiga. Lõigake 5-10 mikroniviljudeks optilise mikroskoobi vaatluseks. Epoksüvaigu või metakrüülhappega põimitud koeplokkidest lõigatud üliõhukesed on paksus 20-50 nanomeetrid ja need on spetsiaalselt elektronmikroskoobi all vaatluseks. Üldise õpetamiseks kasutatud juureotsade ja varrede lõike nimetatakse üldiselt parafiini sektsioonideks.